Please use this identifier to cite or link to this item: https://publication.npru.ac.th/jspui/handle/123456789/829
Title: Isolation and Identification of Bacteria from Soil from Nam Nao National Park In Phetchabun and Chaiyaphum provinces
การคัดแยกและการจำแนกเชื้อแบคทีเรียจากดินในเขตอุทยานแห่งชาติน้ำหนาว ในบริเวณจังหวัดเพชรบูรณ์ และชัยภูมิ
Authors: Meeain, Path
Parhira, Supawadee
Srisawang, Piyarat
Pekthong, Dumrongsak
ปัถย์ หมีอินทร์
สุภาวดี พาหิระ
ปิยะรัตน์ ศรีสว่าง
ดำรงศักดิ์ เป๊กทอง
Keywords: bioactive compound
secondary metabolites
apoptosis
anticancer activity
Issue Date: 9-Jul-2020
Publisher: Nakhon Pathom Rajabhat University
Citation: Abebe B., Feleke M. and Berhanu A. (2013). Isolation and screening of antibiotic producing actinomycetes from soils in Gondar town. North West Ethiopia. Asian Pacific Journal of Tropical Disease, 2013 3(5), 375-381.
Atta, H. M. (2010). Production, Purification, Physico- Chemical Characteristics and Biological Activities of Antifungal Antibiotic produced by Streptomyces antibioticus. AZ-Z710. American-Eurasian Journal of Scientific Research, 2010 5(1), 39-49.
Bakker P., Berendsen R., Doornbos R., Wintermans P. and Pieterse C. (2013). The rhizosphere revisited: root microbiomics. Frontiers in Plant Science, 2013 4, 165.
Bibb M.J. (2005). Regulation of secondary metabolism in Streptomycetes. Current Opinion in Microbiology, 2005 (8), 208-215.
Collins C.H., P.M. Lyne and J.M. Granje, (1995). Microbiological Methods. (129-131). Butterworth and Heinemann Publishers, London,
Eman M.J. and Noor H.R. (2014). Extraction and Purification of Antimicrobial agent Produced from Actinomycetes Isolated from Agriculture soils. Journal of Babylon University. Pure and Applied Sciences, 2014 (2),
Kavita T. and Rajinder K. Gupta. (2013). Diversity and isolation of rare actinomycetes: an overview. Critical Reviews in Microbiology, 2013 39(3), 256-294.
LABEDA D.P. and SHEARER M.C. (1990). Isolation of actinomycetes for biotechnological applications. In: D.P. Labeda (ed.) Isolation of Biotechnological Organisms from Nature, McGraw-Hill Lnc, New York, 1-19.
Monisha K., Renu S. and Rup L. (2011). SELECTIVE ISOLATION OF RARE ACTINOMYCETES PRODUCING NOVEL ANTIMICROBIAL COMPOUNDS. International Journal of Advanced Biotechnology and Research, 2011 2(3), 357-375.
Nagwa A.A., Sahar M.T. and Dina M.H. (2012). SELECTIVE ISOLATION OF RARE ACTINOMYCETES FROM DIFFERENT TYPES OF EGYPTIAN SOIL. The Egyptian Society of Experimental Biology (bot.), 2012 8(2), 175-182.
Newman D.J. and Cragg G.M. (2007). Natural products as sources of new drugs over the last 25 years. Journal of Natural Products, 2007 70(3), 461-477.
Newman D.J., Cragg G.M. And Snader K.M. (2003). Natural products as sources of new drugs over the period 1981-2002. Journal of Natural Products, 2003 66(7), 1022-1037.
Okudoh V.I. and Wallis F.M. (2007). Antimicrobial activity of rare actinomycetes isolated from natural habitats in KwaZulu-Natal, South Africa. South Africa Journal of Science, 2007 (103), 216-222
Olaf T., Chunxu S., Jeroen S.D., Michiel V. and Paolina G. (2017). The Ecological Role of Volatile and Soluble Secondary Metabolites Produced by Soil Bacteria, Trends in Microbiology, 2017 25(4), 280-292.
Panchanathan M., Jayachandran V. and Kannan S. (2014). Pharmaceutically active secondary metabolites of marine actinobacteria. Microbiological Research, 2014 169(4), 262-278.
Ramesh S. and William A. (2013). Culturable rare Actinomycetes : diversity, isolation and marine natural product discovery. Applied Microbiology Biotechnology, 2013 (97), 9291-9321.
Shiring E.B. and Gottlieb D. (1966). Methods for characterization of Streptomyces species. International Journal of Systematic bacteriology, 1966 (16), 313-340.
Usha K.M., Vijayalakshmi M., Sudhakar P. and Sreenivasulu K. (2012). Isolation, Identification and Molecular Charecterization of Rare Actinomycetes from Mangrove Ecosystem of Nizampatnam. Malaysian Journal of Microbiology, 2012 8(2), 83-91.
Van Wezel G.P. and McDowell K.J. (2011). The regulation of the secondary metabolism of Streptomyces: new links and experimental advances. Natural Product Reports, 2011 (28), 1311-1333.
Yoke-Kqueen C., Learn-Han L., Cheng-Yun C.C. and Vui-Ling Clemente .M.W. (2015). Isolation, identification and screening of Actinobacteria in volcanic soil of Deception Island (the Antarctic) for antimicrobial metabolites. Polish polar Research, 2015 36(1), 67-78.
You K.M. and Park Y.K. (1996). A new method for the selective isolation of actinomycetes from soil. Biotechnology Techniques, 1996 (10), 541-546.
Abstract: The objective of this research is to isolate bacteria and screening bacteria that are capable of producing bioactive compounds from soil samples obtained from Nam Nao National Park In Phetchabun and Chaiyaphum provinces, and finding suitable conditions for the production of bioactive substances. The results of bacterial isolation from the soil in the Nam Nao National Park can be separated into 10 isolates, but when cultured in a specific culture medium in each condition to find suitable conditions to induce the product bioactive compound, it was found that 2 isolates S1 and S2 could produce secondary metabolite in the Glucose yeast peptone medium. The liquid-liquid extracted from culture was extracted by a partition with dichloromethane (S1DMC, S2DMC), ethyl acetate (S1OAC, S2OAC) and the aqueous layer and evaporate until dry before leading to the in vitro assay. Colorectal cells including HT-29 and HCT116 were incubated with S1OAC, S2OAC, S1DCM, and S2DCM extracts at the dose of 0.1- 1. 0 mg/ml for 24 h and cell viability was evaluated by MTT assay. The extracts inhibited cell proliferation in HT29 and HCT116 cells in a dose dependent manner with S2OAC had highest inhibitory effect at concentration at 50% (IC50) approximately 0.5 mg/ml in both cells compared with the control cells treated with 0.1% DMSO. Following treatment of extract S2OAC at 1 mg/ml for 24 h on HT-29 and HCT116, cancer cells turned into the early and late stages of apoptosis approximately at 70% and 80% respectively. It suggests apoptosis effect following extract S2OAC treatment in colorectal cancer cells. The bacteria isolates of S1 and S2 which are isolate from soil sample from Nam Nao National Park can be further used as anticancer agents against colon cancer cell lines
งานวิจัยชิ้นนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อคัดแยกแบคทีเรียที่สามารถสร้างสารออกออกฤทธิ์ทางชีวภาพ ได้จากตัวอย่างดินใน เขตอุทยานแห่งชาติน้ำหนาว ในบริเวณจังหวัดเพชรบูรณ์ และชัยภูมิ และหาสภาวะที่เหมาะสมต่อการเจริญและการสร้างสาร ออกฤทธิ์ทางชีวภาพ ผลที่ได้จากการแยกเชื้อแบคทีเรียจากดินในอุทยานน้ำหนาว สามารถแยกได้ 10 ไอโซเลต เมื่อนำมา เพาะเลี้ยงลงในอาหารเลี้ยงเชื้อแบบจำเพาะในแต่ละสภาวะเพื่อหาสภาวะที่เหมาะสมเพื่อเหนี่ยวนำให้มีการสร้างสารทุติยภูมิ นั้นพบว่ามี 2 ไอโซเลตได้แก่ S1 และ S2 ที่สามารถสร้างสารทุติยภูมิได้ดีในอาหาร Glucose yeast peptone medium นำ อาหารเหลวที่ได้จากการเพาะเลี้ยงมาสกัดแยกโดยวิธี liquid-liquid extraction ด้วย ไดคลอโรมีเทนได้สารสกัด S1DCM และ S2DCM และสกัดด้วยเอทธิลอะซีเตทได้สารสกัด S1OAC และS2OAC นำสารสกัดหยาบที่ได้ในแต่ละชั้นไปทดสอบความ เป็นพิษกับเซลล์มะเร็งลำไส้ชนิด HT-29 และ HCT116 ที่ความเข้มข้นตั้งแต่ 0.1-1.0 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตรหาค่าร้อยละการ ตายของเซลล์ด้วยวิธี MTT assay และ cell apoptosis assay พบว่าสารสกัดหยาบที่นำมาทดสอบนั้นมีความสามารถใน การยับยั้งการเจริญของเซลล์มะเร็ง HT-29 และ HCT116 ได้ดีโดยเฉพาะสารสกัด S2OAC ให้ค่าการยับยั้งเซลล์มะเร็งร้อยละ 50 ที่ความเข้มข้น 0.5 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร และพบว่าทำให้เกิดการตายในระยะเริ่มต้นและระยะสุดท้ายของเซลล์มะเร็งชนิด HT-29 และ HCT116 เท่ากับร้อยละ 70 และ 80 ตามลำดับ โดยสรุปสารทุติยภูมิที่ได้จากแบคทีเรียไอโซเลต S1 และ S2 ใน ตัวอย่างดินสามารถนำไปพัฒนาเพื่อใช้เป็นสารต้านมะเร็งลำไส้ได้ต่อไป
URI: https://publication.npru.ac.th/jspui/handle/123456789/829
Appears in Collections:Proceedings of the 12th NPRU National Academic Conference



Items in DSpace are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.